酶聯免疫吸附試驗(ELISA)是目前臨床實驗室檢測免疫學指標*受歡迎、應用范圍*廣泛的方法，具有靈敏度高、特異性強、快速簡便、重復性好、成本低、環(huán)保且適合大批量人群篩查等優(yōu)點，雖然操作簡單，但是一些影響因素不容小覷，臨床待檢標本常受溶血、黃疸、脂濁、類風濕因子、高濃度非特異性免疫球蛋白、藥物、血液抗凝劑及細菌污染等因素的影響，導致檢測結果判斷錯誤，本文就ELISA 法檢測的影響因素及相應對策做一綜述，提高檢測的準確性。
酶聯免疫吸附法(enzyme linked immunosorbentassay，ELISA)是一種特殊的試劑分析方法，在免疫酶技術的基礎上發(fā)展起來的一種新型的免疫測定技術，其試劑易于保存、結果判斷較為客觀，是目前實驗室檢測抗原抗體*經濟、*普遍的試驗診斷方法。其原理是將抗原(抗體)結合到固相載體表面，再將待測抗體(抗原)、酶標抗原(抗體)與固相抗原(抗體)結合形成免疫復合物，經洗滌使免疫復合物與待測抗體(抗原)呈比例，加入酶反應底物使其與固相上的酶反應變色， 根據顏色做定性或定量分析，得出檢測結果。ELISA 法步驟包括標本的采集、保存、加樣、溫育、洗板、顯色、比色以及結果判斷，臨床采集待檢樣本過程中常出現溶血、黃疸、脂濁，類風濕因子、高濃度非特異性免疫球蛋白、藥物及血液抗凝劑等亦對結果產生一定影響。雖然操作簡單，但還是需要注意一些因素的影響，試劑的選擇、正確的操作、優(yōu)良的儀器都與檢測結果密切相關。本文根據樣本的影響因素及操作流程中可能出現的相關問題展開筆述， 對ELISA 法檢測的影響因素及相應對策作一綜述，希望提高ELISA 法檢測的準確性。
1 樣本的影響因素
臨床采取空腹抽取靜脈血清作為ELISA 檢測標本，標本采集過程中很多因素可能導致檢測結果不準確，如溶血、脂濁、類風濕因子、甲胎蛋白、高濃度非特異性免疫球蛋白、藥物、血液抗凝劑及細菌污染等。
2 操作的影響因素
2.1 試劑的準備試劑的質量如抗原抗體的純度及親和力、標記物的比活性、滴度及特異性等直接影響檢測結果，不同廠家試劑敏感性、特異性不盡相同， 對ELISA 試劑盒應正確選擇，定期評價并建立科學的接收標準，結合常規(guī)血液篩查情況，對實際的均一性、適用性、穩(wěn)定性，選出靈敏度、特異度及精密性合適的試劑保證檢測結果的準確。其次試劑盒的儲存方式、運輸條件及有效期均為影響檢測結果的重要因素， 試劑盒一般2~8℃冰箱保存， 注意不要緊貼冰箱儲存室后壁以防止試劑凍結失效， 可避免使用時試劑受溫差影響導致酶標板上凝集小水珠及反應出現溫差而影響抗原抗體的反應。使用前需將試劑盒放置37℃恒溫箱溫育30min，且不同廠家、不同批號的試劑不能混合使用。剩余試劑應及時放入干燥劑密封保存在2~8℃冰箱，試劑打開后一周內有效，同時注意做好室內質檢，確保實驗結果的可靠性。
2.2 樣本的采集、保存及預處理標本的運輸及保存、檢測人員的自身素質均可能對檢測結果造成不良影響，為避免出現錯誤樣品應準確標明編號、種類、受檢者姓名及采集時間，收集后認真核對，拒收不符合要求的標本及申請單， 嚴格按照拒收制度處理，同時處理合格標本，做好后續(xù)工作，避免延誤導致標本出現溶血等其它不良情況。標本的預處理對檢測結果有非常明顯的影響。標本離心需徹底且必須待血液凝固后方能分離血清， 也可在標本采集時使用帶分離膠的采血管提取，使用未混入保存液的血液做檢測標本。在此過程中保證待檢標本新鮮、避免細菌污染，否則易出現假陽性結果，若不能及時檢測可將分離的血清于4℃保存， 超過一周于-20℃保存，避免反復凍融，防止出現假陰性結果。若血清中含有類風濕因子或免疫復合物也將造成假陽性結果。
2.3 加樣ELISA 檢測加樣時應垂直將樣本準確加入微孔底部， 注意避免吸頭碰到酶標板上的包
被物，盡量慢吸快放，防止濺出或產生氣泡，避免液體外濺使血清殘留在反應壁上。每次吸樣注意更換吸頭，做到一樣一吸頭，避免交叉污染，干吸頭每次加樣前在血清中抽吸三次保證吸樣準確，滴加試劑時建議先將滴瓶搖勻擠去滴再加樣。加樣前先將微孔板平放在板架臺上，以免對洗板機的自動操作帶來影響， 為了保證加樣的準確性， 建議使用準確性高的微量移液器且定期進行校正。加樣品稀釋液、酶結合物應用液、底物應用液及終止液時可采用定量多道加液器， 迅速完成加液過程， 加樣后用不干膠或膠帶紙封好酶標板防止水分蒸發(fā)或雜物進入孔內， 注意封板膜不可二次利用，避免交叉污染，剩余的微孔板、不干膠或膠帶紙與干燥劑一同保存在備用自封塑料袋中。大批量檢測大型機構體檢標本時可采用直接加入適量血清的加樣模式， 經濟環(huán)保提高工作效率]。
在實際操作過程中， 待檢標本和酶標志物先后順序加入， 于是在競爭法中因為兩者的不同時加入而存在一個“不公平”競爭現象，研究表明，競爭法ELISA 檢測受加樣方法的影響存在統(tǒng)計學意義，將標本和酶標志物先在試管中等量混和均勻后再加入酶標板小孔杯中可降低-HBc 檢測的假陽性率。
2.4 溫育
溫育是ELISA 至關重要的一步，不同的溫育環(huán)境對檢測結果有影響， 操作中應嚴格按照說明書控制溫育時間及溫度， 并注意封閉避免邊緣效應。為確保各板溫度都能迅速達到平衡，不可將反應板疊加放置， 設定的溫度及時間嚴格按照說明書進行， 一般加入待測標本后使其與固相抗原(抗體)置于37℃環(huán)境下溫育。因為很多恒溫箱的構造，溫度及檢測的溫度并非酶標板溫育溫度，所以使用恒溫箱溫育時建議將溫度計置于酶標板旁，保證酶標板旁溫度為37℃。干育和水溫的影響差異較為明顯，建議使用水溫，注意將固相板放入水中，防止受熱不均勻。溫育時間是影響檢測結果的一大因素。
2.5 洗板
洗板目的在于將特異性結合于固相上的抗原(抗體)與溫育過程中吸附的非特異性成份分離，使免疫復合物與待測抗體(抗原)呈一定比例，洗板是否合格直接影響檢測結果的準確性。洗板應嚴格按照說明控制洗板時間及洗板次數，ELISA 檢測一般用洗滌液洗板3 次，洗滌液應嚴格按照操作說明進行稀釋， 洗液應注滿每個微孔并注意洗液不外溢，垂直甩板避免交叉污染，防止出現假陰性及假陽性結果。使用洗板機洗板可一定程度上避免環(huán)境污染、提高工作效率，洗滌開始時注意觀察每根吸液針是否一直插入孔底并吸干孔內全部液體， 嚴格按照要求設置一定的洗板時間及洗板次數。洗板過程中注意沖力大小，避免沖力過大導致酶結合物丟失，吸光度值偏低。洗液應根據不同廠家的酶標板調整注水量， 注意不要溢出孔外； 稀釋洗液所用的蒸餾水或去離子水酸堿度適中，使配出的洗液pH 在7.2~7.6 范圍內，用非金屬容器保存，保持液體新鮮無污染、沉淀。洗板結束后將板拍干， 應垂直扣在備好的干凈的吸水紙或毛巾上，且注意每次更新干凈的吸水紙或毛巾。洗板時還應注意以下問題：(1) 需每天校正注液量及殘液量， 洗滌后殘液量不得大于2μl；(2)及時更換破損吸液針，避免破壞底板包被；(3)針對不同廠家酶標板注意調整吸液頭下降高度， 避免沖洗針頭卡住酶標板；(4)注意調整洗液量，洗液量過多將溢出，過少將達不到洗滌效果；(5)關機前使用蒸餾水沖洗管道，避免洗液的結晶物堵塞管道；(6)
不同種試劑盒的洗液嚴禁混合使用。臨床操作中， 工作人員由于擔心洗板次數過少達不到去除非特異性物質的理想效果而增加洗板次數，*近研究發(fā)現，隨著洗板次數的增加樣本檢測的OD 值降低，造成假陰性結果及灰區(qū)標本的漏檢。
2.6 顯色及結果判斷
試劑顯色時A、B 液按順序加入且間隔不超過10min，如先將兩液混合再加樣則需保證等體積混合。顯色劑不宜過多，注意避光反應。顯色是*后一步溫育反應，酶將無色底物催化反應呈有色， 反應的溫度和時間均為影響結果的重要因素， 目前市場上大多數進口的ELISA 檢測顯色溫度處于18~30℃。一定時間內，陰性孔可保持無色，但陽性孔會隨時間的延長而顯色加強。研究表明，顯色溫度對實驗結果有明顯影響，顯色溫度不同，試劑檢測能力差距非常大，溫度低于21℃時試劑盒對于質控物的檢出能力下降，溫度過低導致結合反應速率變慢[41]，顯色不充分，
造成低值陽性結果的漏檢， 所以操作中應嚴格控制溫度。顯色時間不宜過短，因為一些低滴度可能不能及時出現反應，造成假陰性結果。結果判斷應按照說明書在規(guī)定時間內完成，研究報道終止反應后的時間對OD 值結果有明顯影響，10~15min陽性結果OD 值逐漸下降，陰性結果的OD 值有所上升，所以必須嚴格按照操作說明進行。
在加液和混合過程中產生氣泡、微孔條底部不透明、帶水滴、有劃痕及不規(guī)則的表面都可能引起吸光值的升高，易造成假陽性結果，若顯色但酶標儀讀值為陰性的灰色值樣區(qū)的樣本不管其是否來源于高危人群均需復檢并參考參比試劑。
2.7 其它因素
實驗室的環(huán)境亦是影響試驗結果的一大因素， 合理控制實驗室的通風、采光及防塵，實驗室的溫度及濕度可使用空調加以控制，濕度控制在35%~65%間，并避免噪音及電磁波干擾。

原創(chuàng)作者：上海恒遠生物科技有限公司